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211035--Qiagen QuantiTect Virus +ROX Vial Kit

更新時間:2025-06-13      點擊次數(shù):72
211035--Qiagen QuantiTect Virus +ROX Vial Kit 用戶指南
產(chǎn)品概述
211035--Qiagen QuantiTect Virus +ROX Vial Kit 是一款專為病毒核酸定量檢測設(shè)計的高效工具,由生命科學(xué)公司 Qiagen 研發(fā)生產(chǎn)。該試劑盒適用于多種病毒的核酸檢測,包括但不限于 RNA 病毒和 DNA 病毒,可廣泛應(yīng)用于病毒學(xué)研究、臨床診斷、疾病監(jiān)測等領(lǐng)域。它能夠快速、準確地對病毒核酸進行定量分析,為科研人員和臨床工作者提供可靠的數(shù)據(jù)支持,助力病毒相關(guān)研究和疾病防控工作。
技術(shù)原理
反轉(zhuǎn)錄 - 實時熒光定量 PCR(RT - qPCR)原理
本試劑盒基于反轉(zhuǎn)錄 - 實時熒光定量 PCR 技術(shù)。對于 RNA 病毒,首先在反轉(zhuǎn)錄酶的作用下,以病毒 RNA 為模板合成互補 DNA(cDNA)。反轉(zhuǎn)錄過程中,試劑盒提供的特異性引物會與病毒 RNA 的特定區(qū)域結(jié)合,在反轉(zhuǎn)錄酶的催化下,從引物起始合成 cDNA 鏈。
隨后進入實時熒光定量 PCR 階段,這一過程基于 PCR 的指數(shù)擴增原理。在 PCR 反應(yīng)體系中,包含熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶、dNTPs(脫氧核糖核苷三磷酸)、特異性引物以及熒光染料或熒光探針。當 PCR 反應(yīng)進行時,DNA 聚合酶以 cDNA 或 DNA 病毒的核酸為模板,根據(jù)引物的引導(dǎo),合成新的 DNA 鏈。隨著 PCR 循環(huán)次數(shù)的增加,目標核酸片段呈指數(shù)級擴增。
熒光檢測原理
試劑盒中加入了 ROX(羅丹明 X)作為內(nèi)參熒光染料,用于校正孔間差異。同時,采用 SYBR Green I 熒光染料或 TaqMan 探針進行核酸檢測。
  • SYBR Green I 熒光染料:SYBR Green I 能夠與雙鏈 DNA 結(jié)合,在游離狀態(tài)下,SYBR Green I 幾乎沒有熒光信號;當它與雙鏈 DNA 結(jié)合后,熒光信號會顯著增強。隨著 PCR 反應(yīng)中雙鏈 DNA 的不斷合成,與 SYBR Green I 結(jié)合的量也逐漸增加,熒光信號強度與 PCR 產(chǎn)物的數(shù)量呈正相關(guān),通過實時監(jiān)測熒光信號強度,即可反映出目標核酸的擴增情況,從而實現(xiàn)對病毒核酸的定量分析。

  • TaqMan 探針:TaqMan 探針是一段與目標核酸序列互補的寡核苷酸,其 5' 端標記有報告熒光基團,3' 端標記有淬滅熒光基團。在 PCR 反應(yīng)過程中,當引物延伸至探針結(jié)合位點時,Taq 酶的 5' - 3' 外切酶活性會將探針降解,使報告熒光基團與淬滅熒光基團分離,報告熒光基團發(fā)出的熒光信號不再被淬滅,從而產(chǎn)生可檢測的熒光信號。熒光信號強度同樣與 PCR 產(chǎn)物的數(shù)量相關(guān),以此實現(xiàn)對目標核酸的定量檢測。

產(chǎn)品特點
  1. 高靈敏度:能夠檢測到極低濃度的病毒核酸,可檢測到低至幾個拷貝的病毒 RNA 或 DNA,有助于早期病毒感染的診斷和研究,即使在病毒感染初期病毒載量較低時,也能準確檢測到病毒核酸的存在。

  1. 高特異性:試劑盒中包含的特異性引物和探針,經(jīng)過精心設(shè)計和優(yōu)化,能夠與目標病毒核酸序列特異性結(jié)合,有效避免與其他非目標核酸序列的交叉反應(yīng),確保檢測結(jié)果的準確性,減少假陽性結(jié)果的出現(xiàn)。

  1. 寬檢測范圍:可在較寬的濃度范圍內(nèi)對病毒核酸進行準確定量,無論是低病毒載量樣品還是高病毒載量樣品,都能實現(xiàn)可靠的檢測和定量分析,滿足不同研究和檢測場景的需求。

  1. 操作簡便:試劑盒提供了完整的試劑和詳細的操作說明,實驗流程標準化,無需復(fù)雜的操作步驟和特殊的儀器設(shè)備,科研人員只需按照說明書進行操作,即可完成從樣本處理到結(jié)果分析的整個過程,大大提高了實驗效率。

  1. 穩(wěn)定性好:各試劑組分經(jīng)過嚴格的質(zhì)量控制和穩(wěn)定性測試,在推薦的儲存條件下,能夠保持良好的性能,確保不同批次的試劑盒檢測結(jié)果具有較高的一致性和重復(fù)性,為科研和臨床檢測提供可靠的保障。

  1. 兼容性強:適用于多種樣本類型,包括血清、血漿、組織勻漿、拭子提取物等,同時兼容不同品牌和型號的實時熒光定量 PCR 儀,方便科研人員根據(jù)自身實驗室條件進行選擇和使用。

使用方法
實驗前準備
  1. 試劑檢查:收到試劑盒后,檢查試劑盒包裝是否完好,確認各試劑組分是否齊全,包括反轉(zhuǎn)錄試劑、PCR 反應(yīng)預(yù)混液、特異性引物、ROX 染料、陽性對照、陰性對照等。查看試劑的有效期,確保在有效期內(nèi)使用。將試劑盒短暫離心(低速,如 2000 - 3000 rpm,離心 1 - 2 分鐘),使附著在管蓋上的試劑集中于管底。

  1. 樣本準備

  • 樣本采集:根據(jù)實驗?zāi)康暮蜆颖绢愋?,采用合適的方法進行樣本采集。如采集血清或血漿樣本時,需嚴格按照無菌操作規(guī)范進行靜脈采血,分離血清或血漿;采集組織樣本時,使用無菌器械獲取組織,并迅速放入液氮或 - 80℃冰箱中保存,避免樣本降解。

  • 樣本處理:對于不同類型的樣本,需要進行相應(yīng)的核酸提取處理??墒褂?Qiagen 或其他品牌的核酸提取試劑盒,按照說明書的操作步驟提取病毒核酸。提取后的核酸樣本需進行濃度和純度測定,可采用超微量紫外分光光度計或熒光定量法進行檢測,確保核酸質(zhì)量符合實驗要求。

  1. 儀器準備:準備好實時熒光定量 PCR 儀,確保儀器運行正常,按照儀器操作手冊進行預(yù)熱和校準。根據(jù)實驗需求,選擇合適的反應(yīng)板和封板膜,將反應(yīng)板放置在 PCR 儀的樣品槽中。

實驗操作步驟
  1. 反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(適用于 RNA 病毒檢測)

  • 配制反應(yīng)體系:在無菌的 PCR 管中,按照以下比例配制反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系(以 20 μL 體系為例):

  • 5×QuantiTect Reverse Transcription Buffer:4 μL

  • QuantiTect Reverse Transcriptase Mix:1 μL

  • RNase - free Water:補至 14 μL

  • 模板 RNA:適量(根據(jù)樣本核酸濃度調(diào)整,一般為 1 - 10 μL)

  • 混合均勻:用移液器輕輕吹打或振蕩 PCR 管,使反應(yīng)體系充分混合均勻,短暫離心(2000 - 3000 rpm,1 - 2 分鐘),使反應(yīng)液集中于管底。

  • 反應(yīng)條件:將 PCR 管放入 PCR 儀中,設(shè)置反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件:42℃孵育 30 分鐘(進行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)),95℃孵育 15 分鐘(滅活反轉(zhuǎn)錄酶)。反應(yīng)結(jié)束后,將 cDNA 產(chǎn)物置于冰上或 - 20℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/span>

  1. 實時熒光定量 PCR 反應(yīng)

  • 配制反應(yīng)體系:在無菌的 PCR 管或反應(yīng)板孔中,按照以下比例配制 PCR 反應(yīng)體系(以 20 μL 體系為例):

  • 2×QuantiTect PCR Master Mix:10 μL

  • ROX Reference Dye(根據(jù) PCR 儀型號選擇合適濃度):1 μL

  • 上游引物(10 μM):0.5 μL

  • 下游引物(10 μM):0.5 μL

  • cDNA 模板或 DNA 模板:適量(根據(jù)反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物或樣本核酸濃度調(diào)整,一般為 1 - 5 μL)

  • RNase - free Water:補至 20 μL

  • 混合均勻:用移液器輕輕吹打或振蕩反應(yīng)管或反應(yīng)板,使反應(yīng)體系充分混合均勻,短暫離心(2000 - 3000 rpm,1 - 2 分鐘),使反應(yīng)液集中于管底。

  • 封板:如果使用反應(yīng)板,需使用封板膜將反應(yīng)板密封,確保密封良好,防止反應(yīng)過程中液體蒸發(fā)。

  • 反應(yīng)條件:將反應(yīng)管或反應(yīng)板放入實時熒光定量 PCR 儀中,設(shè)置 PCR 反應(yīng)條件:

  • 預(yù)變性:95℃,15 分鐘(激活熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶,使模板 DNA 變性)

  • 循環(huán)反應(yīng):94℃,15 秒(變性);55 - 60℃,30 秒(退火,根據(jù)引物的 Tm 值調(diào)整);72℃,30 秒(延伸),進行 40 - 45 個循環(huán)

  • 熔解曲線分析(可選,用于檢測 PCR 產(chǎn)物的特異性):95℃,15 秒;60℃,1 分鐘;95℃,15 秒

  • 啟動反應(yīng):確認 PCR 儀的參數(shù)設(shè)置無誤后,啟動 PCR 反應(yīng)。在反應(yīng)過程中,實時熒光定量 PCR 儀會實時監(jiān)測熒光信號強度,并記錄數(shù)據(jù)。

結(jié)果分析
  1. 數(shù)據(jù)查看:PCR 反應(yīng)結(jié)束后,使用實時熒光定量 PCR 儀配套的數(shù)據(jù)分析軟件查看實驗數(shù)據(jù)。軟件會自動生成擴增曲線和熔解曲線(如果進行了熔解曲線分析),通過觀察擴增曲線的形狀和 Ct 值(循環(huán)閾值,即熒光信號達到設(shè)定閾值時的循環(huán)數(shù)),判斷樣本中病毒核酸的含量。

  1. 定量計算:根據(jù)標準曲線法或相對定量法進行病毒核酸的定量計算。

  • 標準曲線法:使用已知濃度的病毒核酸標準品(如試劑盒提供的陽性對照或自行制備的標準品),進行梯度稀釋后,按照上述實驗操作步驟進行 PCR 反應(yīng),繪制標準曲線(Ct 值與標準品濃度的對數(shù)呈線性關(guān)系)。根據(jù)樣本的 Ct 值,在標準曲線上查找對應(yīng)的核酸濃度,從而實現(xiàn)對樣本中病毒核酸的定量分析。

  • 相對定量法:如果只需要比較不同樣本之間病毒核酸的相對表達量,可采用相對定量法。選擇一個內(nèi)參基因(如 β - actin、GAPDH 等),同時對樣本中的內(nèi)參基因和目標病毒核酸進行 PCR 反應(yīng),通過計算目標基因與內(nèi)參基因的 Ct 值差值(ΔCt),以及不同樣本之間的 ΔΔCt 值,來分析目標病毒核酸在不同樣本中的相對表達變化。

  1. 結(jié)果報告:根據(jù)實驗數(shù)據(jù)和分析結(jié)果,撰寫實驗報告,詳細記錄實驗?zāi)康?、實驗方法、實驗結(jié)果(包括樣本 Ct 值、病毒核酸濃度、定量分析結(jié)果等)以及實驗結(jié)論。確保實驗結(jié)果的準確性和可靠性,如有異常結(jié)果,需進行進一步的分析和驗證。

實驗后處理
  1. 試劑保存:實驗結(jié)束后,將剩余的試劑按照要求保存于 - 20℃冰箱中,避免反復(fù)凍融。對于已開封的試劑,需盡快使用,并在使用前檢查試劑是否有變質(zhì)或污染的跡象。

  1. 廢棄物處理:實驗過程中產(chǎn)生的廢棄物,如含有樣本、試劑的液體以及使用過的耗材等,應(yīng)按照實驗室生物安全和化學(xué)廢棄物處理規(guī)定進行分類處理。對于含毒核酸的樣本和試劑,需進行高壓滅菌或化學(xué)消毒處理后,再進行丟棄,防止病毒傳播和環(huán)境污染。

注意事項
  1. 試劑使用

  • 嚴格按照說明書要求的儲存條件保存試劑,避免試劑因儲存不當而失效。

  • 使用前將試劑從冰箱中取出,置于室溫下解凍,并充分混勻,但要避免劇烈振蕩,防止產(chǎn)生氣泡。

  • 試劑使用過程中,應(yīng)使用無菌的移液器和吸頭,避免交叉污染。每次取試劑后,及時將試劑管蓋緊,放回冰箱保存。

  1. 樣本處理

  • 樣本采集和處理過程中,需嚴格遵守?zé)o菌操作規(guī)范,防止樣本被外源核酸污染,導(dǎo)致假陽性結(jié)果。

  • 對于高致病性病毒樣本,需在生物安全實驗室中按照相應(yīng)的生物安全等級進行操作,確保操作人員的安全。

  • 樣本核酸提取過程中,要注意操作的準確性和穩(wěn)定性,確保提取的核酸質(zhì)量符合實驗要求。提取后的核酸樣本應(yīng)盡快進行檢測,如需保存,可置于 - 80℃冰箱中,但避免多次凍融。

  1. 儀器操作

  • 實時熒光定量 PCR 儀需定期進行校準和維護,確保儀器的性能穩(wěn)定和檢測結(jié)果的準確性。

  • 在使用 PCR 儀前,檢查儀器的運行狀態(tài),確保儀器的溫度、熒光檢測等功能正常。

  • 反應(yīng)板和封板膜需與 PCR 儀兼容,封板時要確保密封良好,防止反應(yīng)過程中液體蒸發(fā)和污染。

  1. 實驗設(shè)計

  • 在進行實驗前,需合理設(shè)計實驗方案,設(shè)置足夠的重復(fù)樣本和對照樣本(如陽性對照、陰性對照、空白對照等),以確保實驗結(jié)果的可靠性和可重復(fù)性。

  • 對于不同類型的病毒和樣本,需根據(jù)其特點和實驗需求,選擇合適的引物和探針,并進行預(yù)實驗,優(yōu)化實驗條件。

  1. 安全防護:實驗過程中使用的試劑和樣本可能具有一定的生物危害性或化學(xué)毒性,操作人員需佩戴手套、口罩、護目鏡等防護裝備,在通風(fēng)櫥中進行操作。如不慎接觸到試劑或樣本,應(yīng)立即用大量清水沖洗,并根據(jù)情況進行相應(yīng)的處理。

常見問題及解決方法
  1. 無擴增曲線

  • 原因:可能是引物或探針設(shè)計不合理、引物或探針濃度過低、模板核酸質(zhì)量不佳、反應(yīng)體系中存在抑制劑、PCR 反應(yīng)條件不合適等。

  • 解決方法:重新設(shè)計引物或探針,確保其特異性和有效性;適當提高引物或探針的濃度;重新提取樣本核酸,確保核酸質(zhì)量;檢查反應(yīng)體系中是否存在抑制劑,如樣本中可能含有蛋白質(zhì)、多糖等物質(zhì),可通過純化核酸或稀釋樣本進行處理;優(yōu)化 PCR 反應(yīng)條件,如調(diào)整退火溫度、延伸時間等。

  1. 擴增曲線異常(如曲線斜率低、平臺期不明顯等)

  • 原因:可能是模板核酸濃度過高或過低、引物或探針濃度不合適、dNTPs 濃度不足、熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶活性下降、PCR 反應(yīng)循環(huán)數(shù)設(shè)置不合理等。

  • 解決方法:對模板核酸進行梯度稀釋,選擇合適的濃度進行實驗;調(diào)整引物或探針濃度;檢查 dNTPs 濃度,確保其充足;更換熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶;根據(jù)實驗需求,合理調(diào)整 PCR 反應(yīng)循環(huán)數(shù)。

  1. Ct 值偏大

  • 原因:可能是模板核酸濃度過低、引物或探針效率低、PCR 反應(yīng)條件不合適、反應(yīng)體系中存在抑制劑等。

  • 解決方法:增加模板核酸的上樣量;優(yōu)化引物或探針設(shè)計,提高其擴增效率;調(diào)整 PCR 反應(yīng)條件,如提高退火溫度、延長延伸時間等;對樣本進行純化處理,去除抑制劑。

  1. 假陽性結(jié)果

  • 原因:可能是實驗過程中發(fā)生交叉污染、引物或探針特異性差、陽性對照濃度過高、PCR 反應(yīng)條件過于寬松等。

  • 解決方法:加強實驗操作的規(guī)范性,使用帶濾芯的吸頭,避免交叉污染;重新設(shè)計引物或探針,提高其特異性;降低陽性對照的濃度;優(yōu)化 PCR 反應(yīng)條件,提高反應(yīng)的嚴謹性。

  1. 熔解曲線出現(xiàn)多個峰

  • 原因:可能是引物二聚體形成、非特異性擴增、模板核酸不純等。

  • 解決方法:降低引物濃度,優(yōu)化引物設(shè)計,減少引物二聚體的形成;調(diào)整 PCR 反應(yīng)條件,提高反應(yīng)的特異性;對模板核酸進行進一步純化處理,去除雜質(zhì)。




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